Анестезия для морских свинок

Легче всего если у вас ингаляционный наркоз есть, с минимальной, или без премедикации. Морские свинки могут самомтоятельно себя травмировать, после внутримышечных иньекций анестетиков, так что желательно избегать таковых. Пишу на скорую руку, поэтому не могу дать подробностей, я просто впечатаю часть конспекта, который нам давали по анастезии морских свинок(извините, но на английском языке)
Если не возражаете против английского, то могу завтра выложить полный конспект нашего анестезиолога, про анастезию грызунов и кроликов.

Guinea Pigs and Chinchillas
• difficult to anesthetize safely
• easily stressed
• very difficult to intubate
• variable responses to injectable anesthetic agents
• higher incidence of post-operative complications
• IM injections of anesthetic agents have been reported to cause self-mutilation
• pre-anesthetic medication may be helpful if the handler is competent and the injection can be performed atraumatically:
— atropine 0.05 mg/kg IM is indicated to reduce copious salivary secretions
— midazolam 0.3 — 1.0 mg/kg plus butorphanol 0.4 — 0.8 mg/kg combined IM
— midazolam 0.3 — 1.0 mg/kg plus buprenorphine 0.01 — 0.03 mg/kg combined IM
Anesthetic induction:
— in some situations, the least stressful induction method may be to place the
unpremedicated patient in a small induction chamber for delivery of
isoflurane (or sevoflurane); once the patient is relaxed, the induction can be
completed with a face mask .
— if not already administered, an opioid analgesic agent (see above) should be
given at this time
Anesthetic maintenance:
— anatomical considerations make intubation very difficult, so oxygen± inhalant are typically delivered via a face mask .
— inhalant agents (most commonly isoflurane) are preferred over injectable
agents for maintenance of anesthesia

Мы так же используем ингаляционный наркоз. Если свинка небольшая, то смачиваем ватку эфиром и вместе со свинкой под колпак. Как успокаивается, вынимаем и добавляем уже по мере необходимости. Надо спросить у Пламена Паскова использовал ли он золетил для свиней (морских)?

Наркоз для морских свинок

При хирургических вмешательствах хорошо зарекомендовали себя инъекции кетамина HCl и ксилацина. Шприц наполняют кетамином HCl (100мг/1кг веса тела) и ксилацином (5 мг/1 кг веса тела), после чего делается внутримышечная инъекция. Приблизительно через 5 минут животное оказывается лежащим на боку, а через 10 минут можно начинать операцию. Продолжительность действия лекарств — 60 минут, а сна после операции — 4 часа. При этом виде наркоза не нужна ваголитическая премедикация атропином.

Ингаляционный наркоз с использованием капель галотана менее популярен. Применяя его, нужно следить, чтобы пропитанная лекарством ткань не касалась слизистой оболочки носа, так как могут возникнуть реакции на коже. Он также предполагает обязательную подкожную премедикацию атропином (0,10 мг/1 кг веса тела), чтобы избежать сильной секреции слюны, которую животное может вдохнуть. Перед наркозом животных не следует кормить 12 часов. Если в качестве подстилки используется сено, то необходимо убрать и подстилку.

В течение нескольких дней перед анестезией морской свинке необходимо давать вместе с водой витамин С (1-2 мг/1 мл), так как недостаток витамина С может повлиять на глубину наркоза и продолжительность сна животного. Во время пробуждения от наркоза морские свинки становятся очень чувствительными к понижению температуры. После хирургического вмешательства их необходимо поместить под инфракрасную лампу или положить на грелку, причем температура тела пациента (39°С) должна поддерживаться на постоянном уровне до полного пробуждения.

Анестезия экзотических животных

Особенности наркоза у грызунов и рептилий

Анестезия грызунов и экзотических млекопитающих животных (хорьки, хомяки, мыши, крысы, кролики, шиншиллы, морские свинки), рептилий (змеи, ящерицы, черепахи), птиц и амфибий используется для проведения многих диагностических и хирургических процедур.

Проведение анестезии у таких пациентов имеет свои особенности и предполагает наличие специального опыта у врача-анестезиолога.

Все общие принципы анестезии и предоперационной подготовки кошек и собак справедливы и для экзотических животных. Обязательно проведение общего клинического обследования, оценка анестезиологического риска, дополнительное обследование функций органов и систем.

Особую сложность в проведении общей анестезии представляют собой рептилии, птицы и амфибии. Принципиальным у этих животных является разница в скорости обмена веществ и анатомо-физиологические особенности. Это определяет различия в предоперационной подготовке, выборе препаратов для анестезии и послеоперационном наблюдении.

Предоперационная подготовка

Подготовка перед операцией предполагает соблюдение голодной диеты перед проведением анестезии. Это необходимо для предотвращения регургитации (отрыгивания пищи) и дальнейшей аспирации содержимого желудка (то есть проникновения остатков пищи в дыхательные пути).

• У грызунов и птиц период голодной диеты должен составлять не более трех часов ввиду их быстрого обмена веществ.
• У рептилий опасность аспирации маловероятна из-за особенностей строения голосовой щели, но тем не менее некоторые плановые исследования проводятся с соблюдением голодной диеты в течение 3 суток.

В некоторых случаях животным требуется предварительная инфузионная терапия, то есть капельницы, включающие в себя растворы электролитов и растворы декстрозы, активное согревание.

Общая анестезия

Инъекционная анестезия

У экзотических животных хорошо зарекомендовали себя инъекционные препараты, используемые у кошек и собак, а именно Пропофол, Золетил и его аналоги. Чаще используется Пропофол для хорьков и мелких млекопитающих.

Пропофол хорошо подходит для индукции наркоза у игуан, при внутривенном введении обеспечивает кратковременную анестезию, достаточную для проведения небольших манипуляций и интубации. Однако следует помнить, что Пропофол не обладает обезболивающим эффектом.

Газовые анестетики

При проведении длительных процедур имеет смысл поддерживать анестезию с помощью ингаляционных анестетиков, которые поступают в легкие посредствам маски или интубационной трубки.

У змей и варанов голосовая щель находится близко в ротовой полости и интубация бывает возможна даже у бодрствующих животных. У большинства ящериц и черепах интубация обычно требует предварительной седации с использованием Золетила.

Основным газовым анестетиком является Изофлюран, который обеспечивает быстрое введение в анестезию и более быстрое восстановление по сравнению с другими анестетиками. Объем подачи рассчитывается в МАКах.

Минимальная альвеолярная концентрация (МАК) — это концентрация анестетика в альвеолах, которая определяется процентным соотношением газов и обеспечивает наркозный сон. МАК изофлюрана для анестезии:

• рептилий — составляет 1,5 — 2,1%;
• кроликов — 2,05%;
• у птиц — 1,34%.

Важно контролировать необходимую концентрацию в дыхательном контуре, чтобы избежать передозировки анестетика и, как следствие, остановки дыхания и других опасных осложнений анестезии. В наших условиях есть надежный способ мониторинга концентрации газовой смеси с помощью специального монитора, который при помощи магистрали соединяется с контуром и отображает на дисплее изменения концентрации газообразного анестетика.

У рептилий из-за отсутствия диафрагмы под общей анестезией может возникать остановка дыхания, в связи с чем необходимо проведение искусственной вентиляции легких для поддержания постоянной глубины анестезии. Стимулом для восстановления дыхания у рептилий является снижение концентрации кислорода в контуре, тогда как у млекопитающих – увеличение концентрации углекислого газа. Таким образом, когда процедура заканчивается, прекращается подача кислорода и продолжается вентиляция с использованием только комнатного воздуха.

Постоперационная терапия

В послеоперационном периоде основными задачами являются:

• поддержание температуры пациента и контроль гипотермии;
• восстановление водно-электролитного баланса, то есть введение жидкостей, так как обезвоживание пациента снижает скорость восстановления и выведения анестетика из организма.

Мониторинг анестезии

Проведение анестезии у экзотических животных является специфичной и необходимой процедурой, имеющей свои особенности ввиду физиологических различий у пациентов. Объективный мониторинг снижает риски осложнений.

Долгое время исследование электрокардиограммы (ЭКГ) широко использовалось и обеспечивало надежную индикацию частоты пульса у животного. Однако использование ЭКГ не изучено у всех видов животных и неэффективно у мелких животных и рептилий по причине либо высокой частоты сердечных сокращений, либо небольшого электрического потенциала.

Ультразвуковое допплеровское исследование используется для оценки кровотока и давления в сосудах за счет отражения ультразвуковых волн от красных кровяных клеток – эритроцитов. Эта методика считается очень точной, но не в состоянии отслеживать многие физиологические изменения в состоянии пациента, поэтому не находит широкого распространения.

Обыкновенный или пищеводный стетоскоп является хорошим средством мониторинга у всех животных, кроме рептилий.

Хорошо зарекомендовала себя в качестве метода мониторинга анестезии пульсоксиметрия. Это неинвазивный метод определения степени насыщения крови кислородом. В основе метода лежит спектрофотометрический способ оценки количества гемоглобина в крови. Пульсоксиметр имеет периферический датчик, в котором находится источник света двух длин волн — «красный» и «инфракрасный». Степень поглощения зависит от того, насколько гемоглобин крови насыщен кислородом (каждая молекула гемоглобина способна присоединить максимум 4 молекулы кислорода). Фотодетектором регистрируются изменения цвета крови в зависимости от этого показателя. Усреднённое наполнение отображается монитором пульсоксиметра.

В любом случае ни один аппаратный способ мониторинга не заменит постоянного контроля анестезиолога активности рефлексов, наблюдения за дыханием и сердечной деятельностью, термометрией.

В отношении рептилий актуально также следить за температурой воздуха в помещении, так как он влияет на температуру тела пациента. У разных видов диапазон возможных температур может варьироваться, но во всех случаях температурный порог не должен опускаться ниже 24 градусов.

Анестезия в ветцентре доктора Воронцова

Применение анестезии может понадобиться как для хирургического вмешательства, так и для проведения некоторых диагностических процедур. Проконсультируйтесь с врачом-анестезиологом в нашем центре. У нас есть неинфекционный стационар для животных, в котором вы можете оставить своего питомца на время операции и процедур, а также послеоперационного ухода.

Мы находимся в Москве, недалеко от пересечения МКАД и Каширского шоссе. Точный адрес: Совхоз им. Ленина, дом 3а (смотрите схему проезда), метро Домодедовская, Зябликово, Орехово, Красногвардейская.

Анестезия для грызунов

рассказывается о применении анестезирующих средств для грызунов

Просмотр содержимого документа
«Анестезия для грызунов»

Дозы Золетила для разных видов грызунов и зайцеобразных:

ЖИВОТНОЕ ИММОБИЛИЗАЦИЯ ОБЩАЯ АНЕСТЕЗИЯ

Крыса 1 – 4 мг/100 г 2 – 5 мг/100 г

Хомяк 1 – 3 мг/100 г 3 – 8 мг/100 г

Мышь 8 – 10 мг/100 г 10 – 18 мг/100 г

Песчанка 0,5 – 1 мг/100 г 1 – 2 мг/100 г

После внутримышечной инъекции Золетила через 1 минуту животное теряет координацию, ещё через 1-2 минуты пропадает рефлекс переворачивания, и пациента можно уложить на бок. Максимальный эффект достигается через 5 – 10 минут после инъекции. Здесь приведены дозы Золетила для некоторых животных. В первой колонке даны дозы для иммобилизации и кратковременной анестезии. В правой колонке – для проведения более длительных и болезненных оперативных вмешательств.

Кетамин – хорошо известный и давно применяемый в ветеринарии диссоциативный анестетик. Его можно применять как отдельно, так и в комбинации с другими препаратами. Отдельно Кетамин применяется в основном для проведения мелких процедур в дозе от 40 до 90 мг/кг. Однако, мы не рекомендуем применять его как мононаркоз, т.к. он может не обеспечить достаточного уровня седации и миорелаксации, кроме того, после введения может возникнуть длительная стадия возбуждения.

Расскажем о некоторых комбинациях, потенциирующих седативный и анальгезирующий эффект.

Первая комбинация – Ацепромазин/Кетамин.

Ацепромазин вводят за 3 – 5 минут до введения Кетамина, что купирует стадию возбуждения и индуцирует более выраженную релаксацию и анальгезию. Препарат вводят из рассчета 1:10 по Д.В. по предполагаемой дозе Кетамина. Комбинация позволяет выполнить большинство мелких болезненных процедур и является достаточно безопасной. Реверсия наступает у разных видов животных через 1 – 4 часа.

Следующая комбинация – Ксилазин/Кетамин.

При применении этой комбинации в некоторых случаях необходима ваголитическая премедикация. Можно использовать Атропин в дозе 0,04 – 0,1 мг/кг. Особенно это касается пожилых животных со склонностью к брадиаритмии. Отмечено, что если ваготоническая брадикардия у крыс проявляется после введения Ксилазина, то последующая коррекция ЧСС Атропином оказывается неэффективной. Данная комбинация является достаточно эффективной и, как правило, обеспечивает достаточную седацию и анальгезию.

В целом мы считаем, что при оптимальном расчете дозы, комбинация Ксилазин/Кетамин является относительно безопасной, однако надо отметить, что при использовании высоких доз препарата, а также больным и ослабленным животным в послеоперационном периоде необходима гидратация и дополнительный обогрев вплоть до полной реверсии. В редких случаях при использовании Ксилазина может возникать апноэ и, хотя, грызуны, в отличие от многих млекопитающих, достаточно устойчивы к гипоксии, необходимо обеспечить принудительную вентиляцию легких, что при невозможности интубации трахеи осуществляется с помощью массажа грудной клетки или использовать кислородный bypass с плотно подогнанной наркозной маской . При упорном апноэ, а также при необходимости быстрой реверсии можно применять Альфа – 2 –рецепторов антагонисты (Атипамизол или Иохимбин).

После введения смеси Ксилазин/Кетаимн через 1 минуту наблюдается потеря ориентации, атаксия, в редких случаях слабовыраженная стадия возбуждения. Что бы избежать стадии возбуждения Ксилазин рекомендуется вводить за 1 – 3 минуты до введения Кетамина. Хирургическая стадия наступает через 6 – 10 минут после инъекции. О ее наступлении свидетельствует полная релаксация, отсутствие педального и лингвального рефлекса.

При использовании высоких доз у крыс и хомяков может отсутствовать корнеальный рефлекс, что при стабильном спонтанном дыхании и отсутствии выраженой брадикардии не расценивают как признак опасной передозировки. Надо отметить, что всегда следует сразу вводить предполагаемую расчетную дозу, т.к. при недостаточной анестезии повторные введения оказываются малоэффективными. В зависимости от дозы реверсия наступает через 1 – 5 часов.

Для проведения очень длительных и болезненных операций можно рекомендовать смесь АЦП/Ксилазин/Кетамин.

При этом АЦП комбинируется с Кетамином в ранее приведенном соотношении – 1:10 , а доза Ксилазина уменьшается вдвое. Данная комбинация имеет высокий анестезиологический риск и может быть рекомендована только в редких случаях. Реверсия составляет от 5 до 12 часов.

Эффективность применения дыхательных аналептиков у грызунов остается спорной.

Ингаляционная анестезия является наиболее эффективной и безопасной для всех грызунов и может быть рекомендована при любых оперативных вмешательствах, исключая операции в ротовой полости и на лицевой части черепа, т.к. интубировать мелких грызунов не представляется возможным, а наркозная маска – помеха для хирурга.

Для ингаляционной анестезии грызунов можно использовать такие препараты как Эфир, Метоксифлуран, Галотан, Изофлуран и его ближайшие аналоги.

Последние десятилетия Эфир не применяется для анестезии животных в силу его раздражающего воздействия на слизистую дыхательных путей, высокую токсичность и слабый анальгезирующий эффект.

Наиболее предпочтительными препаратами являются Галотан и Изофлуран. Причем Изофлуран – препарат первого выбора, т.к. он имеет самый низкий коэффициент растворения в крови и, соответственно, минимальную токсичность. Он обеспечивает максимально быстрое вхождение в наркоз, а также почти моментальную реверсию. В некоторых случаях при проведении болезненных операции анальгетический эффект Изофлурана оказывается недостаточным и, в этом случае, его комбинируют с Закисью Азота, что усилит анальгетический эффект и сократит расход дорогостоящего Изофлурана.

При применении ингаляционных анестетиков обычно не требуется премедикация. И только в редких случаях, если животное очень беспокоится можно применить АЦП.

Также для потенциирования анальгетического эффекта и сокращения дозы газового анестетика возможно применение сильнодействующих анальгетиков (Буторфанол 0,25 – 0,5 мг/100 гр массы или Бупренорфин в дозе 0,5 – 1 мг/100 г). Также их применяют в послеоперационный период, вводя вышеуказанные дозы каждые 2 часа п/к или 12 часов соответственно.

Для морских свинок применение Галотана нежелательно, т.к. этот препарат обладает выраженным гепатотоксичным эффектом для этих животных. Кроме того при работе с морскими свинками надо иметь в виду, что при введении в наркоз может произойти рефлекторная задержка дыхания. Поэтому этих животных помещают в наркозный контур с осторожностью.

Для применения газовых анестетиков можно использовать не только импортные испарители. Довольно неплохо подходит и отечественный «Полинаркон», который дает возможность подавать анестетик в смеси с кислородом и закисью азота. И т.к. коэффициент давления пара для некоторых анестетиков является почти одинаковым, то калибровочная шкала для Галотана имеющаяся на «Полинарконе» подходит и для Изофлюрана.

Мониторинг за вхождением пациента в наркоз осуществляется путем наблюдения за исчезновением ряда рефлексов. Первым пропадает рефлекс переворачивания. При выпадении педального рефлекса, как правило, достигнут желательный уровень седации, и животное фиксируют на операционном столе. О наступлении хирургической стадии наркоза свидетельствует выпадение пальпебрального и лингвального рефлексов.

Корнеальный рефлекс часто пропадает, но это не является признаком опасной передозировки при спонтанном дыхании и отсутствии нарушений со стороны сердечно-сосудистой системы. У крыс даже при ослабленном корнеальном рефлексе, может сохраняться болевая чувствительность. Для этих животных важно проверить «рефлекс сдавливания запястий». Рефлекс проверяют сильно сдавливая запястья, максимально разводя при этом грудные конечности крысы в стороны. Если при этом животное не реагирует, то желаемая степень анестезии достигнута.

Мониторинг во время операции включает контроль за дыханием и ЧСС. Возникшие во время операции аритмии, как правило, не удается корректировать с помощью соответствующих препаратов. В случае возникновения сердечных аритмий увеличивают подачу кислорода до 3 – 5 литров/мин, при ингаляционной анестезии уменьшают объёмный % анестетика в П.С.Г., также показано введение электролитов.

Увеличенная» частота дыхания, как правило, свидетельствует о неадекватной анальгезии. Редкое и прерывистое дыхание может говорить о передозировке анестезирующих средств. Применение дыхательных аналептиков малоэффективно. При применении неингаляционных анестетиков проводят искусственную вентиляцию легких (кислородный Bypass), увеличивают подачу кислорода, вводят электролиты. При ингаляционной анестезии уменьшают объёмный % анестетика, проводят искусственную вентиляцию. При применении ингаляционной анестезии применение реверсирующих агентов не требуется.

Общая анестезия грызунов (практический опыт)

Растущая популярность содержания грызунов в последнее время вынуждает ветеринарных врачей осваивать необходимые технологии диагностики и лечения этих животных. Хирургические вмешательства и болезненные процедуры у грызунов часто требуют адекватного обезболивания.

Невозможно обеспечить достойный уровень ветеринарной помощи грызунам без качественной общей анестезии. В течение нескольких лет мы отрабатывали различные методики анестезии грызунов. Это было особенно сложно в свете действующих ограничений на использование наркотических и психотропных препаратов в ветеринарии. Конечно, очень удобно наркотизировать грызуна кетамином, но. увы.

На сегодняшний день нами отработана довольно эффективная и надежная схема анестезии крыс и морских свинок.

Мы применяем двухкомпонентный наркоз:

1. Внутримышечно или подкожно вводим ксилазин 20 мг/кг (0,1 мл/100 г веса животного). Через 10-15 минут можно переходить ко второму этапу.

2. Внутривенно вводим пропофол (диприван) 10 мг/кг (0,1 мл официнального раствора на 100 г живого веса). Вуаля!

В течение 15-30 минут после однократной инъекции пропофола можно спокойно проводить практически любые вмешательства, в т.ч. полостные, офтальмологические и ортопедические. При необходимости пропофол можно добавлять половинными дозами.

Отдельно о внутривенных инъекциях. Крыса и морская свинка — это, конечно, не доберман или ротвейлер: попадать грызунам в вену несколько сложнее, но вполне реально.

Мы пользуемся иглами — «бабочками» (scalp vein set) размер 26-27G. Пунктируем обычно подкожную вену внутренней поверхности бедра. Также доступна вена на краниальной поверхности предплечья. Многократно пытались пунктировать вены на ушах у морских свинок, — устойчивых результатов не получили. Определенные сложности возникают иногда с фиксацией животного во время внутривенной инъекции. Морские свинки, к счастью, кусаться не умеют, а крысы — напротив, могут причинить своими зубами существенный вред. Поэтому нелишне бывает завернуть переднюю часть туловища и голову крысы в плотную материю перед инъекцией.

Для удобства дозирования пропофол мы обычно разбавляем физиологическим раствором в 4-8 раз. Пропофол рекомендуем вводить медленно, наблюдая за реакцией животного. Иногда достаточно бывает1/2 — 2/3 расчетной дозы.

После инъекции иглу из вены не вынимаем и, по возможности, фиксируем для повторных инъекций.

Иногда на введение пропофола может развиться КРАТКОВРЕМЕННАЯ депрессия дыхания. В таких случаях можно несколько раз мануально форсировать движения грудной клетки. При использовании описанной схемы тяжелых анестезиологических осложнений мы не наблюдали ни разу.

Несколько слов о неудачном опыте анестезии. Внутрибрюшинная (вместо внутривенной) инъекция пропофола во многих случаях позволяет добиться необходимого уровня анестезии. Однако при таком введении очень сложно контролировать глубину и продолжительность наркоза. Вводить препарат необходимо в больших дозах (20-40 мг/кг). Также очень сильно различается время наступления анестезии (от 10 до 40 мин после инъекции). Депрессия дыхания, возникающая после внутрибрюшинной инъекции трудно поддается контролю — 2 животных у нас погибли.

Тем не менее внутрибрюшная анестезия пропофолом остается для нас основным методом при операциях у хомяков.